大鼠脑出血模型实验方法

造模方法

大鼠于术前禁食12h，称重后给予0.4％戊巴比妥钠1ml／100ｇ进行腹腔注射麻醉。麻醉后采用断尾取血法采集大鼠自体尾部血液。常规消毒后在距鼠尾尖部约5mm 处剪断鼠尾，滴取血液至EP 管中，用微量进样器抽取自体血50ul 备用。采血后鼠尾常规进行消毒并止血。将大鼠以俯卧位用立体定位仪固定在操作台上，使前后囟处于同一平面，门齿沟的水平与耳间线比较低2.4mm。常规备皮消毒，充分暴露手术区域，沿头皮正中纵行切开约10mm，显露颅骨，用30％双氧水腐蚀骨膜，暴露前囟和冠状缝，根据《脑立体定位图谱》进行尾壳核定位。将微量进样器固定于立体定位仪上，调整左右及前后坐标尺使微量进样器尖端垂直于矢状缝右侧旁开3.0mm，前囟前0.2mm 处，用三棱针在正对针尖下方钻一直径约1.0mm 的小孔，深度达硬脑膜表面，调整上下坐标尺，以颅骨外板为零点，使微量进样器进针深度为6.0mm。按照5ul/min 的速度，缓慢匀速的将大鼠自体血加50ul 注入至尾壳核内，注血完成留针约15 分钟后再缓慢的退针，用骨蜡对钻孔进行封闭后缝合手术切口，进行常规消毒后将大鼠侧卧位放置于单独的鼠笼。假手术组只行进针，不注入自体血，手术操作同其余各组。上操作均遵守无菌原则。

造模照片                                        出血效果