MPB:中科院深圳先进院戴磊组小鼠粪便样本中16S拷贝数的定量检测

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小鼠粪便样本中16S拷贝数的定量检测

Quantitative Analysis of 16S rRNA Gene Copies in Mouse Fecal Sample

刘红宾1*,吕青青1,戴磊1

1.中国科学院深圳先进技术研究院,深圳,广东省

*通讯作者邮箱:binhongliu@126.com

摘要:16S rRNA基因和宏基因组测序技术是研究肠道菌群结构与功能的重要手段,由此可以获取微生物群落的结构和功能组成信息;然而,二者得到的数据均为相对丰度类型,大大削弱了不同样品间的可比性,也难以揭示生物量水平的菌群结构和功能变化。本文旨在运用实时荧光定量PCR技术(Real-time PCR)技术对小鼠粪便中的16S rRNA基因进行定量检测,为准确分析肠道菌群的结构提供技术参考。

关键词:16S rRNA基因,绝对定量,肠道菌群

材料与试剂

试剂:

1.高保真酶(PrimeSTAR,TAKARA,R045A)

2.TB Green酶(TAKARA,RR820A)

3.Omega胶回收试剂盒(Omega,D2500-01)

4.琼脂糖

5.引物(27F-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG,1541R-AAGGAGGTGATCCAGCCGCA ;331F-TCCTACGGGAGGCAGCAGT,797R-GGACTACCAGGGTATCTAATCCTGTT)[1]

仪器设备

1.Nanodrop 2000

2.电泳仪

3.普通PCR仪(Bio-read)

4.荧光定量PCR仪(Bio-read)

实验步骤

A.全长16S rRNA基因标准品制备

1.全长16S rRNA基因扩增

PCR扩增体系:

试剂

浓度

体积 (μl)

PrimerSTAR

-

25

27F

2 μM

5

1541R

2 μM

5

小鼠粪便DNA

60-80 ng/μl

1

ddH2O

14

PCR扩增程序(30个循环):

98 °C

5 min

98 °C

10 s

55 °C

15 s

72 °C

15 s

12 °C

2.全长16S rRNA基因扩增产物回收

按照胶回收试剂盒说明书,对PCR扩增产物进行回收,并利用Nanodrop对其浓度进行测定。

3.全长16S rRNA基因扩增产物拷贝数确定

举例:Nanodrop测得胶回收的16S片段的浓度为182 ng/μl,由于1,500 bp的16S核酸的分子量为5.1 x 105 ng/nmol(https://www.genscript.com/conversion.html),所以标准品中含有3.57 x 10-4 nmol分子,根据阿伏伽德罗常数计算1 μl标准品中含有2.14 x 1011个拷贝。

4.全长16S rRNA基因扩增产物梯度稀释

将标准品做10倍系列稀释, 使其形成109-104拷贝/μl。

B.16S rRNA基因拷贝数标准曲线的制备

1.全长16S rRNA基因梯度拷贝数标准品的定量PCR检测

Real-time PCR扩增体系:

试剂

浓度

体积 (μl)

TB Green 酶

-

10

331F

4 μM

1

797R

4 μM

1

全长16S rRNA 基因DNA标准品

梯度浓度

1

ddH2O

7

PCR扩增程序(40个循环):

98 °C

3 min

98 °C

5 s

55 °C

30 s

+ Plant Read

72 °C

30 s

Melt curve 65 °C to 95 °C, increment 0.5 °C

for 0:05 + Plate Read

12 °C

2.构建16S rRNA基因梯度拷贝数标准曲线

以不同拷贝数的阳性模板的对数为横坐标, 以PCR反应过程中到达荧光阈值的初始循环数(Ct)为纵坐标得到标准曲线, 为待测样品的定量提供了定量检测的参照标准.

C.小鼠粪便DNA待测样品中16S rRNA基因拷贝数的定量检测

对小鼠粪便DNA待测样品,按照“全长16S rRNA基因梯度拷贝数标准品的定量PCR检测”中的程序与条件,进行real-time PCR检测。依据建立的标准曲线,计算出待测样品中的16S rRNA基因拷贝数。

结果与分析

下图1展示了溶解曲线、标准曲线和待测样品的检测结果。依据标准曲线方程,Ct值为8的小鼠粪便DNA样品中含有的16S rRNA基因拷贝数为10^(-0.2819 x 8 + 10.682)= 2.67 × 108个。

图1. RT-PCR方法检测粪便样本中微生物16S rRNA基因拷贝数熔解曲线和标准曲线

参考文献

1.Jian, C., Luukkonen, P., Yki-Jarvinen, H., Salonen, A. and Korpela, K. (2020). Quantitative PCR provides a simple and accessible method for quantitative microbiota profiling. PLoS One 15(1): e0227285.

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