如何有效监视猪场中的蓝耳是否稳定？
关于成功监控蓝耳的思考，应该牢记目标、生产阶段和要监测动物的类型。
为了确定一个猪场的蓝耳病毒（PRRSV）是否稳定，必须确认没有病毒性仔猪出生。
蓝耳病毒的经胎盘传播非常有效，尤其是在妊娠末期，因此，如果在母猪中存在病毒血症，极有可能发生子宫内胎儿感染。
监测方法：
因此，我们必须在产房进行监视。理想情况下，应在出生时对仔猪进行测试，但由于很难对这些动物进行测试，因此通常会在断奶前不久对其进行测试。如果结果为阴性，则可以确认在繁殖雌性中没有病毒传播。如果呈阳性，则应在出生时取样，以确定仔猪出生时是否已被感染或在哺乳期间被交叉污染感染。
血清是确定病毒存在的参考样品。最初，应从总共30头仔猪中采集血样，这将使我们能够以95％的确信度检测到10％的患病率对于随机样本。当对有疾病迹象的动物进行采样时，其敏感性估计更高。在病毒循环非常低的情况下，例如在稳定计划的最后阶段或在临床上被认为稳定的猪场，此采样强度可能不足，建议将样本量增加到60，这将使我们以检测5％或更高的患病率。由于病毒循环水平较低，应在很长一段时间内进行系统和连续采样，因为可能在几个月的阴性结果后找到阳性样品。一旦我们开始看到阴性结果，至少我们应该监测仔猪的整个繁殖周期。
检测途径：
1、鉴于从年幼动物身上采集血样的难度，对它们的福利的影响以及检测如此低患病率所需的高样本量，已开发出替代的采样方法。一种选择是使用处理液 -去势和尾巴产生的渗出液。由于这种渗出液主要由血浆和血液组成，因此通常在仔猪有病毒血症时才发现该病毒，因此，增加样本量是一个很好的选择，与血清样本分析相比，可以保持良好的敏感性。应该注意的是，处理液的使用仅适用于实行常规去势的猪场。仅使用来自尾部的流体，灵敏度要低得多，不足以可靠地确定养殖场的状态（Vilalta等人，2018）。
2、获得从脐带血液已被证明是在新生儿仔猪PRRSV检测（马丁-瓦尔斯等人，2018）一个可行的选择。尽管该样本更容易获得，但需要在出生时进行收集，并且应注意可以检测到环境污染。但是，它是一种可靠的替代方法，可以轻松监控产仔，并且比仅来自尾部对接的处理液更可取。
3、口腔唾液也被确定为有效样品。这里的问题是护理仔猪通常不会被绳索吸引，因此采样时间长且代表性低，这使其成为不可行的选择。为了提高该技术的实用性，母猪已被包括在所谓的家畜体液中，因为母猪的例子刺激了仔猪咀嚼绳索并提高了该技术的敏感性。但是，这是一个仍在研究中的系统，不是最佳选择。此外，还可以从母猪乳房表面取样已经讨论了使用浸湿的湿巾的基本原理，即如果仔猪被感染，它们将在口腔液中排泄病毒并污染乳房。尽管使用该技术的经验不足，并且评估该系统的价值还为时过早，但结果令人鼓舞，从产房采样面获得的结果也令人鼓舞。然而，在这种情况下，正如我们在脐带中提到的那样，有可能从阴性垫料中获得阳性样本，这表明从环境污染中检测到病毒RNA，因此必须仔细解释结果（Vilalta等，2019）。
4、最后，正在探索使用尸体部位特别是舌头的聚集体样品确定死胎动物中是否存在病毒的可能性（Baliellas，2020年）。
监测后备母猪
另一个关键点是检测后备母猪。这必须包括在进入检疫区之前和通过ELISA和RT-PCR离开检疫区之前进行抽样，以确认其健康状况，监测驯化的有效性并知道感染的时间（如果发生）。应该使用诸如测序之类的工具来确认在适应期间发现的病毒（即疫苗或田间病毒）的身份。尽管这还不足以确认母猪不会对农场构成威胁，但我们至少必须检查它们进入妊娠设施时是否感染病毒。
另一方面，监测种母猪非常困难。血清学的价值很小，因为市场上没有标记疫苗，个体之间的S / P值差异很大，并且取决于引起感染的菌株（Kim等人，2007），并且动物会保持血清阳性数个月。另外，再感染后通常没有继发反应，当它确实发生时，它非常快，因此收集配对样品在确定病毒再循环方面通常很少用。同样，通过RT-PCR进行监测也是不切实际的，因为在任何给定时间，病毒血症动物的数量非常低，成年动物和具有先天免疫力的病毒血症非常短。这使得检测能力在实践中非常低并且不值得。基于上述所有内容，我们可以得出以下结论：监测生产中的母猪仅在阴性农场和诊断疾病暴发时有用。
相反，监视生长中的动物非常容易，几乎可以使用任何样本和技术。唯一的考虑因素是使用样本量和抽样系统，以便根据预期的感染率很好地代表正在研究的猪群。
辛塔·普列托·苏亚雷