SDS-PAGE电泳实验原理及步骤

聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)是以聚丙烯胺凝胶作为载体的一种区带电泳。 SDS-PAGE是在聚丙烯酰胺凝胶系统中引进SDS(十二烷基磺酸钠),对蛋白质进行量化、比较及特性鉴定的一种经济、快速、而且可重复的方法。

基本原理

SDS-PAGE是依据混合蛋白的分子量不同来进行分离的。SDS是一种阴离子去垢剂,可与蛋白质结合,形成SDS-蛋白质复合物。由于SDS带有大量负电荷,好比蛋白质穿上带负电的“外衣”,蛋白质本身带有的电荷则被掩盖,从而消除了蛋白质分子之间电荷差异。

实验步骤

(1)将蛋白质样品与5X样品缓冲液(20ul+5ul)在一个eppendorf 管中混合。放入100℃加热5-10min,离心取上清点样。

(2)将玻璃板、样品梳、Spacer用洗涤剂洗净,用ddH2O冲洗数次,再用乙醇擦拭,晾干。

(3)组装好玻璃板:固定玻璃板时,两边用力一定要均匀,防止夹坏玻璃板。

(4)按表格1,根据要检测的蛋白的分子大小,选择相应的分离胶浓度,按表格2的配方进行配制。配制过程要迅速,催化剂TEMED要在注胶前再加入,否则凝结无法注胶。注胶过程最好一次性完成,避免产生气泡。

(5)向玻璃板间灌制分离胶,立即覆一层重蒸水,大约20 min后胶即可聚合。水封的目的是为了使分离胶上延平直,并排除气泡。 凝胶聚合好的标志是胶与水层之间形成清晰的界面。

(6)按表格3配制浓缩胶。

(7)将分离胶上层重蒸水倾去,滤纸吸干,灌制浓缩胶,插入样品梳。注意,样梳需一次平稳插入,梳口处不得有气泡,梳底需水平。

(8)装好电泳系统,加入电极缓冲液,将样品梳拔去,上样。上样前请确保锯齿孔内的气泡全部排出,否则会影响加样效果。另外,上样过程中注射器不可过低,以防刺破胶体,也不可过高,在样下沉时会发生扩散。 为避免边缘效应,最好选用中部的孔注样。

(9)稳压200V,溴酚蓝刚跑出分离胶时,停止电泳,约需45 min~1hr. 最后,小心的将胶剥离玻璃板,进行下一步实验。

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